2022年5月17日火曜日

細胞外小胞と神経変性疾患

シナプスから放出される小胞は
脳の神経ネットワークの中のプレ、ポストシナプス
連携において重要な役割を果たしていると
従来から考えられていました。
実際に細胞外小胞は
〇神経細胞(2)
〇星状膠細胞(3)
〇乏突起膠細胞
〇マイクログリア(4)
これらから放出され、
タンパク質や核酸を輸送しています。
神経変性疾患はタンパク質病理を含みますが、
この病理と関連のあるタンパク質を
上述した神経系から放出された細胞外小胞内に
含み、隣接する健康な神経系細胞に輸送している
可能性が指摘されています。
また、
細胞外小胞とその内容物は
血液脳関門の組織の劣化に神経変性疾患の中で
関わっている事が知られています(5)。
--
Lesley Cheng & Andrew F. Hill(敬称略)
からなる医療研究グループは
神経系における細胞外小胞と
神経毒性のあるタンパク質、miRNAの関係において
現時点で明らかになっている事を総括されています(1)。
その内容の一部、追記、考察を
読者の方と情報共有したいと思います。

//細胞外小胞とタンパク質//ーー
神経病理を持つたんぱく質の
構造変異(misfolding)や凝集は
神経変性の疾患の一つの特徴です。
細胞外小胞は以下の神経毒性のあるタンパク質を
含んでいることが知られています。
〇amyloid precursor protein(APP)(6)
〇Aβ(アミロイドβ)(6,7)
〇prion protein (PrP)(8,9)
〇α-synuclein(10)
〇superoxide dismutase 1(SOD1)(11)
〇tau(12)
--
Creutzfeld–Jakob病のようなプリオン疾患は
伝染性のある病原体です(22)129。
このような伝染性は脳神経疾患における
細胞外小胞の研究の信頼性向上に関与します
実際にプリオンに感染した細胞から
ナイーブ細胞に感染したことが
試験管の研究で明らかになっています(9,13)。
構成物質である
ionophore monensin。
これでプリオン感染細胞の治療に使いましたが
逆に細胞外小胞の放出を高め、
ナイーブ細胞のプリオン感染性を高めました(14)。
--
他の神経毒性があるたんぱく質も
細胞外小胞によってプリオン様に広がっていく事が
想定されています。
アルツハイマー病、パーキンソン病の
Braak staging分類によれば、
病気が進行するに違って、
タンパク質が近隣の部位に伝搬していくことが
知られています(15,16)。
--
アルツハイマー病、認知症で亡くなった人の
死後の組織から分離した脳由来の細胞外小胞を
マウスに移植することで
αシヌクレインやタウタンパク質の
細胞内蓄積が加速したことが確認されました(17)。
同じような事が
変異タウ遺伝子導入マウスの脳由来の
エクソソームを移植したケースで
確認されています(18,19)。
--
しかしながら、
細胞外小胞が本当に相互接続された
神経細胞間を移動するかどうかの結論はまだ出ていません。

//細胞外小胞とmiRNA//ーー
タンパク質に比べ、miRNAと神経変性疾患の関連を
調べた研究は多くはありません。
しかし、miRNAを調べる事は
有効なバイオマーカーの選定に繋がります。
--
〇プリオン感染
〇アルツハイマー病
これらの疾患の細胞由来のエクソソーム内の
miRNAについて調べられています(20)。
加えて
〇近萎縮性側索硬化症(ALS)
これではCD63+細胞外小胞内にmiR-124が多く含まれています。
これが神経炎症、運動神経劣化を
MMP-9の炎症媒体依存的に促したことが
マウスのケースで知られています。
この細胞外小胞はマイクログリアを受け細胞としています(21)。
--
健康な方とアルツハイマー病の患者さんの
細胞外小胞の比較において
血中においては有効な脳のバイオマーカーは
見つかりませんでした(23)。
一方で、脳特異的なmiRNAは見つかっています。
この差の中で有効なバイオマーカーが見つかる
可能性があります。

//考察//ーー
脳においては神経細胞のつながりが
その機能において重要な役割を与えるので、
「より近隣の神経細胞に対して」
雪崩のように影響を与える事が
体細胞に比べてより重要な可能性があります。
体細胞の場合はマクロファージなどの修復機能がありますが、
神経細胞の場合は元に戻らないという
特質が挙げられるからです。
現状では神経細胞間の直接的な細胞外小胞の移動の
証拠はありませんが、
それを掴むことは意義がある事であると考えられます。
一方で、
マイクログリアなど免疫機能依存的に
神経系の劣化が起きている可能性もあります。
それに細胞外小胞によるタンパク質や核酸の輸送が
関わっている可能性も考えられます。

(参考文献)
(1)
Lesley Cheng & Andrew F. Hill
Therapeutically harnessing extracellular vesicles
Nature Reviews Drug Discovery volume 21, pages379–399 (2022)
(2)
Faure, J. et al. Exosomes are released by cultured 
cortical neurones. Mol. Cell. Neurosci. 31, 642–648 
(2006).
(3)
Zhang, L. et al. Microenvironment-induced PTEN  
loss by exosomal microRNA primes brain metastasis 
outgrowth. Nature 527, 100–104 (2015).
(4)
Pinto, S., Cunha, C., Barbosa, M., Vaz, A. R. &  
Brites, D. Exosomes from NSC-34 cells transfected 
with hSOD1-G93A are enriched in miR-124 and drive 
alterations in microglia phenotype. Front. Neurosci. 
11, 273 (2017).
(5)
Tominaga, N. et al. Brain metastatic cancer cells 
release microRNA-181c-containing extracellular 
vesicles capable of destructing blood–brain barrier. 
Nat. Commun. 6, 6716 (2015).
(6)
Rajendran, L. et al. Alzheimer’s disease β-amyloid 
peptides are released in association with exosomes. 
Proc. Natl Acad. Sci. USA 103, 11172–11177 (2006).
(7)
Rajendran, L. et al. Increased Aβ production leads to 
intracellular accumulation of Aβ in flotillin-1-positive 
endosomes. Neurodegener. Dis. 4, 164–170 (2007).
(8)
Vella, L. J. et al. Packaging of prions into exosomes  
is associated with a novel pathway of PrP processing. 
J. Pathol. 211, 582–590 (2007).
(9)
Coleman, B. M., Hanssen, E., Lawson, V. A. & Hill, A. F. 
Prion-infected cells regulate the release of exosomes 
with distinct ultrastructural features. FASEB J. 26, 
4160–4173 (2012).
(10)
Grey, M. et al. Acceleration of α-synuclein aggregation 
by exosomes. J. Biol. Chem. 290, 2969–2982 (2015).
(11)
Basso, M. et al. Mutant copper-zinc superoxide 
dismutase (SOD1) induces protein secretion pathway 
alterations and exosome release in astrocytes: 
implications for disease spreading and motor neuron 
pathology in amyotrophic lateral sclerosis. J. Biol. Chem. 
288, 15699–15711 (2013).
(12)
Vella, L. J. et al. Packaging of prions into exosomes  
is associated with a novel pathway of PrP processing. 
J. Pathol. 211, 582–590 (2007).
(13)
Fevrier, B. et al. Cells release prions in association  
with exosomes. Proc. Natl Acad. Sci. USA 101,  
9683–9688 (2004).
(14)
Guo, B. B., Bellingham, S. A. & Hill, A. F. Stimulating 
the release of exosomes increases the intercellular 
transfer of prions. J. Biol. Chem. 291, 5128–5137 
(2016).
(15)
Braak, H. & Braak, E. Staging of Alzheimer’s disease- 
related neurofibrillary changes. Neurobiol. Aging 16, 
271–284 (1995).
(16)
Braak, H. et al. Staging of brain pathology related  
to sporadic Parkinson’s disease. Neurobiol. Aging 24, 
197–211 (2003).
(17)
Ngolab, J. et al. Brain-derived exosomes from 
dementia with Lewy bodies propagate α-synuclein 
pathology. Acta Neuropathol. Commun. 5, 46 (2017).
(18)
Baker, S., Polanco, J. C. & Götz, J. Extracellular 
vesicles containing P301L mutant tau accelerate 
pathological tau phosphorylation and oligomer 
formation but do not seed mature neurofibrillary 
tangles in ALZ17 mice. J. Alzheimers Dis. 54,  
1207–1217 (2016).
(19)
Polanco, J. C., Scicluna, B. J., Hill, A. F. & Gotz, J. 
Extracellular vesicles isolated from the brains of 
rTg4510 mice seed tau protein aggregation in a 
threshold-dependent manner. J. Biol. Chem. 291, 
12445–12466 (2016).
(20)
Fernandes, A. et al. Secretome from SH-SY5Y APPSwe 
cells trigger time-dependent CHME3 microglia 
activation phenotypes, ultimately leading to miR-21 
exosome shuttling. Biochimie 155, 67–82 (2018).
(21)
Pinto, S., Cunha, C., Barbosa, M., Vaz, A. R. &  
Brites, D. Exosomes from NSC-34 cells transfected 
with hSOD1-G93A are enriched in miR-124 and drive 
alterations in microglia phenotype. Front. Neurosci. 
11, 273 (2017)
(22) 
Prusiner, S. B. Novel proteinaceous infectious particles 
cause scrapie. Science 216, 136–144 (1982).
(23)
Cheng, L. et al. Small RNA fingerprinting of Alzheimer’s 
disease frontal cortex extracellular vesicles and their 
comparison with peripheral extracellular vesicles.  
J. Extracell. Vesicles 9, 1766822 (2020).


0 コメント:

コメントを投稿

 
;