2022年5月16日月曜日

細胞外小胞と癌の関係

細胞外小胞は健康な身体の恒常性のために
細胞間の連絡役として機能していると考えられますが、
一方で、癌、脳神経疾患、心臓血管疾患
代謝性疾患、自己免疫疾患など
様々な疾患において病態特異的な働きを持つと
考えられています。
その中で転移を中心に特に研究されているのが
癌と細胞外小胞の関係です。
--
Lesley Cheng & Andrew F. Hill(敬称略)
からなる医療研究グループは
上述した癌と細胞外小胞の関連について
現在までわかっていることを総括されています(1)。
その内容の一部、追記、考察について
読者の方と情報共有したいと思います。

癌由来のエクソソームは
〇癌組織の成長
〇転移の促進
〇癌微小環境の整備
これらに対して機能を持つとされています。
癌由来のエクソソームは
原発腫瘍の癌細胞の癌タンパク質、発がん性のRNAs。
これらを輸送し、プレ転移ニッチの形成に関与する
と言われています(2-5)。
従って、
原発腫瘍の特徴と似た環境になります。
腫瘍組織由来の細胞外小胞は
循環器系(リンパ、血液)を通過し、
離れた組織、臓器の実質に向かって滲出します(6)。
この臓器向性はインテグリンの型依存的に生じる
という重要な報告もあります(7)。
--
癌由来の細胞外小胞がどのような病理、病態を生むか
という研究は、細胞外小胞の異種性から
様々な困難性があると言われています(8,9)。
しかし、
いくつかの細胞外小胞は発がん性の内容物を含み
それが滲出、循環、浸入を通じて
転移を生む2次サイトで役割を果たします。
例えば、
〇Wnt10b
これが細胞外小胞から見つかり、腫瘍浸潤を可能にする
上皮間葉転換を促すとされています(10)。
-
〇上皮成長因子受容体(EGFR)
これは癌の微小環境に作用する事によって
癌の成長に関係するとされています(11-13)。
これがAnnexin Aを抑制することによって
頭と首の癌組織に生じるとされています(11)。
-
〇血管内皮増殖因子(VFGF)
これが腫瘍組織由来の微小胞に含み
血管生成を促し、近隣の細胞内で癌成長を促進します(14)。
--
上述したように細胞外小胞の表面リガンドを含む
表現、特徴は取り込まれる細胞種に影響します(7,15)。
例えば
膵臓腺癌細胞由来の細胞外小胞は
肝臓内のマクロファージによって
選択的に取りこまれる傾向にあるとされています。
それによって、TGFβ依存的に
肝臓の線維化の活性化や腫瘍組織量を増やす
働きがあるとされています(15)。
--
細胞外小胞が癌細胞の中で
どのように内容物を仕分けているか?
それについてはよくわかっていません。
しかし、
その内容物の仕分けに関わるESCRT経路の
制御性に不全が出ている事が報告されています(16)。
それによって内容物が増えたり、
放出される細胞外小胞が増える事が想定されています。
実際に
ESCRTの付属タンパク質で
エクソソームの前駆体である腔内膜小胞の
形成に関わるALIXを欠如させたケースでは
乳癌の生体モデルにおいてその成長と
免疫抑制に関わる免疫チェックポイントの発現を
抑制したと報告されています(12)。
さらに
ESCRT-Ⅲをサイレンスすることで
細胞の移動と転移を肝細胞癌で抑えることが
出来たと報告されています(17)。
--
他には、
原発腫瘍の膠芽腫細胞由来の
細胞外小胞は毛細血管の内皮細胞に取り込まれ
血管生成を促したことが知られています。
さらに
細胞外小胞の中の発がん性因子は
間質細胞の増殖を促し、
栄養的な支援を行う中で
組織、血管との接着性を高める事が知られています。
--
細胞外小胞の内容物で最も研究され、
癌を含め他の疾患においても病気との関係性が
知られているのがmicroRNAsです。
例えば
〇miR-100, miR-10b, miR-320a, miR-320b
これらはKRAS変異の大腸癌細胞で取り込まれる事が
知られています。この生理が通常細胞に
影響を与えるとされています。
それが、癌細胞の移動、成長に関与します(5)。
-
〇miR-100-5p, miR-21-5p
前立腺癌幹細胞の細胞外小胞で多く含まれています。
これはプレ転移ニッチ、移動などに関与しています(18)。
-
〇miR-21, miR-378e, miR-143
これらは乳癌細胞の上皮間葉転換に関与している
といわれています(19)。
--
細胞外小胞内のmRNAと癌に関してはほとんど研究はありません。
それらの転送、輸送に関する信頼できる分析手法が
今のところまだ確立されていないのが主因です(20-22)。
--
脳は肺、乳房、皮膚、大腸、腎臓などの癌の
1つのメインとなる転移サイトとして知られています。
その中で細胞外小胞と脳への転移の関係が
調べられています。
その中で、
星状膠細胞は血液脳関門の浸透性を制御しています(23,24)。
この星状膠細胞が脳腫瘍によって機能不全を起こすと
そこから放出される細胞外小胞は
血液脳関門に影響を与えます。
また、癌抑制的に働くPTENはmiR-19aによって
脳の転移組織の中で欠乏している事がわかっています。
このmicroRNAは星状膠細胞由来の細胞外小胞で
亢進されていることがわかっています(25)。
また
癌細胞由来の細胞外小胞は
組織の結合性に関わるtight junctionと
アクチンの再形成に関連するタンパク質を生み出す
miRNAを輸送し、血液脳関門の
組織を破壊することが示されています(26,27)。
アクチンはPDPK1。
Tight junctionはZO1。
これらのタンパク質が関わっていると
報告されています(26,27)。

//細胞種特異的輸送系統(*)の観点//ーー
(*)Cell-type-specific delivery system
転移した癌細胞が原発腫瘍の特徴を残す
という点は離れたサイトにある複数の転移した
腫瘍組織を特異性を持って同時に治療する可能性を与えます。
離れた癌細胞が同じ表面リガンドを持っていれば
それを標的として、結合親和性の高い表面リガンドを
ナノ粒子輸送媒体に装飾し、
その中に薬剤を封入すれば、
離れた複数の転移癌組織を特異的に減退、消滅
させる事ができる可能性があります。
従って、治療の難しい転移癌を治療するときには
特に表面リガンドで癌細胞にしかなく
かつ共通に存在するものを見つける必要があります。
それが見つかる可能性は高いと想定しています。

(参考文献)
(1)
Lesley Cheng & Andrew F. Hill
Therapeutically harnessing extracellular vesicles
Nature Reviews Drug Discovery volume 21, pages379–399 (2022)
(2)
Skog, J. et al. Glioblastoma microvesicles transport 
RNA and proteins that promote tumour growth and 
provide diagnostic biomarkers. Nat. Cell Biol. 10, 
1470–1476 (2008)
(3)
Yokoi, A. et al. Malignant extracellular vesicles carrying 
MMP1 mRNA facilitate peritoneal dissemination in 
ovarian cancer. Nat. Commun. 8, 14470 (2017).
(4)
Cho, J. A., Park, H., Lim, E. H. & Lee, K. W. Exosomes 
from breast cancer cells can convert adipose tissue- 
derived mesenchymal stem cells into myofibroblast-like 
cells. Int. J. Oncol. 40, 130–138 (2012).
(5)
Demory Beckler, M. et al. Proteomic analysis of 
exosomes from mutant KRAS colon cancer cells 
identifies intercellular transfer of mutant KRAS.  
Mol. Cell. Proteom. 12, 343–355 (2013).
(6)
Peinado, H. et al. Pre-metastatic niches: organ-specific 
homes for metastases. Nat. Rev. Cancer 17, 302–317 
(2017).
(7)
Ayuko Hoshino, Bruno Costa-Silva, Tang-Long Shen, Goncalo Rodrigues, Ayako Hashimoto, Milica Tesic Mark, Henrik Molina, Shinji Kohsaka, Angela Di Giannatale, Sophia Ceder, Swarnima Singh, Caitlin Williams, Nadine Soplop, Kunihiro Uryu, Lindsay Pharmer, Tari King, Linda Bojmar, Alexander E. Davies, Yonathan Ararso, Tuo Zhang, Haiying Zhang, Jonathan Hernandez, Joshua M. Weiss, Vanessa D. Dumont-Cole, Kimberly Kramer, Leonard H. Wexler, Aru Narendran, Gary K. Schwartz, John H. Healey, Per Sandstrom, Knut Jørgen Labori, Elin H. Kure, Paul M. Grandgenett, Michael A. Hollingsworth, Maria de Sousa, Sukhwinder Kaur, Maneesh Jain, Kavita Mallya, Surinder K. Batra, William R. Jarnagin, Mary S. Brady, Oystein Fodstad, Volkmar Muller, Klaus Pantel, Andy J. Minn, Mina J. Bissell, Benjamin A. Garcia, Yibin Kang, Vinagolu K. Rajasekhar, Cyrus M. Ghajar, Irina Matei, Hector Peinado, Jacqueline Bromberg & David Lyden 
Tumour exosome integrins determine organotropic metastasis
Nature volume 527, pages329–335 (2015)
(8)
Willms, E., Cabañas, C., Mäger, I., Wood, M. J. A.  
& Vader, P. Extracellular vesicle heterogeneity: 
subpopulations, isolation techniques, and diverse 
functions in cancer progression. Front. Immunol. 9, 
738 (2018).
(9)
Willms, E. et al. Cells release subpopulations of 
exosomes with distinct molecular and biological 
properties. Sci. Rep. 6, 22519 (2016).
(10)
Chen, Y. et al. Aberrant low expression of p85α  
in stromal fibroblasts promotes breast cancer cell 
metastasis through exosome-mediated paracrine 
Wnt10b. Oncogene 36, 4692–4705 (2017).
(11)
Raulf, N. et al. Annexin A1 regulates EGFR activity 
and alters EGFR-containing tumour-derived exosomes 
in head and neck cancers. Eur. J. Cancer 102, 52–68 
(2018).
(12)
Monypenny, J. et al. ALIX regulates tumor-mediated 
immunosuppression by controlling EGFR activity  
and PD-L1 presentation. Cell Rep. 24, 630–641 
(2018).
(13)
Uribe, P. & Gonzalez, S. Epidermal growth factor 
receptor (EGFR) and squamous cell carcinoma of  
the skin: molecular bases for EGFR-targeted therapy. 
Pathol. Res. Pract. 207, 337–342 (2011).
(14)
Al-Nedawi, K., Meehan, B., Kerbel, R. S., Allison, A. C. 
& Rak, J. Endothelial expression of autocrine VEGF 
upon the uptake of tumor-derived microvesicles 
containing oncogenic EGFR. Proc. Natl Acad. Sci. USA 
106, 3794–3799 (2009).
(15)
Costa-Silva, B. et al. Pancreatic cancer exosomes 
initiate pre-metastatic niche formation in the liver. 
Nat. Cell Biol. 17, 816–826 (2015).
(16)
Hikita, T., Kuwahara, A., Watanabe, R., Miyata, M. & 
Oneyama, C. Src in endosomal membranes promotes 
exosome secretion and tumor progression. Sci. Rep. 
9, 3265 (2019).
(17)
Han, Q. et al. Vps4A mediates the localization and 
exosome release of β-catenin to inhibit epithelial- 
mesenchymal transition in hepatocellular carcinoma. 
Cancer Lett. 457, 47–59 (2019).
(18)
Sanchez, C. A. et al. Exosomes from bulk and stem 
cells from human prostate cancer have a differential 
microRNA content that contributes cooperatively  
over local and pre-metastatic niche. Oncotarget 7, 
3993–4008 (2016).
(19)
Donnarumma, E. et al. Cancer-associated fibroblasts 
release exosomal microRNAs that dictate an 
aggressive phenotype in breast cancer. Oncotarget  
8, 19592–19608 (2017).
(20)
Zomer, A. et al. In vivo imaging reveals extracellular 
vesicle-mediated phenocopying of metastatic behavior. 
Cell 161, 1046–1057 (2015).
(21)
Batagov, A. O. & Kurochkin, I. V. Exosomes secreted 
by human cells transport largely mRNA fragments 
that are enriched in the 3’-untranslated regions.  
Biol. Direct 8, 12 (2013).
(22)
de Jong, O. G. et al. A CRISPR-Cas9-based reporter 
system for single-cell detection of extracellular 
vesicle-mediated functional transfer of RNA.  
Nat. Commun. 11, 1113 (2020).
(23)
Janzer, R. C. & Raff, M. C. Astrocytes induce  
blood–brain barrier properties in endothelial cells. 
Nature 325, 253–257 (1987).
(24)
Abbott, N. J., Ronnback, L. & Hansson, E. Astrocyte- 
endothelial interactions at the blood–brain barrier. 
Nat. Rev. Neurosci. 7, 41–53 (2006).
(25)
Zhang, L. et al. Microenvironment-induced PTEN  
loss by exosomal microRNA primes brain metastasis 
outgrowth. Nature 527, 100–104 (2015).
(26)
Tominaga, N. et al. Brain metastatic cancer cells 
release microRNA-181c-containing extracellular 
vesicles capable of destructing blood–brain barrier. 
Nat. Commun. 6, 6716 (2015).
(27)
Zhou, W. et al. Cancer-secreted miR-105 destroys 
vascular endothelial barriers to promote metastasis. 
Cancer Cell 25, 501–515 (2014).


0 コメント:

コメントを投稿

 
;