2025年1月7日火曜日

フィロポディア形成機序と機能

フィロポディア(糸状仮足:Filopodia)は
細胞骨格のような物質ではなく、細胞膜の現象ですが、
その形成機序は細胞骨格と密接に関わるため、
カテゴリとして細胞骨格に含めることにします。


フィロポディアは移動中の細胞において、
ラメリポディア(葉状仮足)の先端から突き出る
アクチンリッチの細長い細胞質突起です(1:Figure 3)。 
従って、ラメリポディアの形成はフィロポディアの形成に先立つことが多いです(31)。

ラメリポディアはシート状の小さな突起です。
シート状で細胞膜隆起断面積が大きいため、
その隆起を支えるアクチン重合体構造は
ARP2/3複合体を介した枝状構造を形成します。
一方、
フィロポディアは指状の突起です。
線維芽細胞や神経細胞の突起では10μmを超えることがあります。
ラメリポディア内では、アクチンリブ(actin ribs)と呼ばれる束上の構造が、
マイクロスパイク(microspikes)としてラメリポディアを超えて伸びる場合、
それらをフィロポディアと呼びます(7)。
これらの複合体構造を結束するためのクロスリンカーがあります。
フィロポディアは、アクチンバンドリングタンパク質(actin-bundling proteins)である
- ファシン(fascin) - フィンブリン(fimbrin)
これらによって束にまとめられたマイクロフィラメント(Actin filaments)を含んでいます(5)。
この時、アクチンフィラメント構造は10以上、束ねられています(58)。
これらのファシン(結束たんぱく質)(40)と、
RIF-Dia2(39)、ENA/VASP(41)によるF-アクチンの高い合成圧は
ラメリポディア細胞質のアクチンの枝状構造がから
向きをそろえた繊維状構造に構造を転換する上での主要な物理的駆動力となります。
この物理的なメカニズムは
「Convergent enlongation model」
「Filament nucleation model」として説明されます(7:Figure 3)。
前者が結束タンパク質から中心的に想起されます。
後者は先端での高い合成圧を核に説明できます。

Formins(Dia2)は枝分かれしないアクチンフィラメント合成(45)。
これに関与するのでラメリポディアからフィロポディア核形成する過程。
これに寄与していると考えられています(7)。
ENA/VASPはアクチンフィラメントのフィロポディア先端部に局在化します(42)。
アクチン繊維構造の+端であるbarbed endのキャップ構造を分解し、
プロフィリンと協同的に働き(44)、先端部でのアクチンフィラメント合成に関与します(43)。
ENA/VASPやインテグリンのフィロポディア突起構造の輸送媒体となっているのは
アクチンフィラメントを導線として移動できるミヨシンXである(46)。
このように推定されます。
結束たんぱく質であるファシンは動的なクロスリンカーで(47:Figure 8A)、
すでに緩く相互作用している束構造をより強化するリンカーして特化している。
このように推定されています(40)。

フィロポディアは、主に細胞外マトリックスで構成される基質との間で
フォーカルアドヒージョン(焦点接着:focal adhesions)を形成し、
それによって細胞表面と基質は連結し、細胞の移動に関与します。 
多くのタイプの移動細胞がフィロポディアを持ち、
化学的指向性(chemotropic cues)の感知と、それに応じた方向性のある移動。
このことにに関与していると考えられています。
フィロポディアの焦点接着は突起先端部、茎の側面に形成される
インテグリン(33)、カドヘリン(34)などの細胞接着分子によって実現します。

上皮細胞の組織としての連続性を支持する密着結合は
カドヘリンなどによって支持されますが、
複数の受容体の同時接続に先立って、初期形成の時点では
(35:Figure 7)のようにフィロポディア、突起同士の接続があります。


RhoファミリーのGTPase、特にCdc42とその下流の中間体が活性化されると、
Ena/Vaspホモロジータンパク質によってアクチン線維の重合が引き起こされます(38)。
成長因子は、受容体型チロシンキナーゼ(receptor tyrosine kinases)に結合し、
アクチンフィラメントの重合を引き起こします。
これらのフィラメントが交差結合されることで、
フィロポディアの支持細胞骨格要素を形成します。
さらに、Rho活性化は、アクチンフィラメントをフィロポディア膜に結合させる
- エズリン(ezrin) - モイシン(moesin) - ラジキン(radixin)
これらファミリータンパク質のリン酸化による活性化を引き起こします(4)。
アクチンの重合速度が突起の伸長速度よりも速いことを
逆行性輸送(Retrograde flow)と呼び、
アクチンは細胞質側に突起の伸長方向に逆行して移動しているように見えます(32)。
このような動的機序は樹状突起の力学的な安定性や
突起表面での力の伝達に貢献するかもしれません。


フィロポディア形成は神経節形成にも密接に関わります。
神経突起の初期形成にも関与します(37)。
シナプス形成のためのGrowth coneには
(7:Figure.2c)のように多くのフィロポディアが存在します。
これが化学的走化性(chemoattractant)に基づいて移動性します(36)。


フィロポディアは、感知、移動、神経突起の成長、細胞間相互作用。
こえらなどの役割を持っています。
脊椎動物では、成長因子が線維芽細胞のフィロポディア形成を刺激し、
線維芽細胞の移動と傷の閉鎖を促進します(2)。
また、マクロファージにおいて、
フィロポディアは「貪食の触手(phagocytic tentacles)」として機能し、
結合した物体を細胞に引き寄せて貪食(食作用)を行います(3)。


多くの細胞タイプがフィロポディアを持っています。
フィロポディアの機能は、以下のようにさまざまな役割に関連付けられています

- ニューロンのシナプス形成のための経路探索(8)
- 神経突起の成長(7)
- シナプス形成の初期段階(9)

上述したようにフィロポディアは神経突起、シナプス形成以外に
神経細胞の分化、分裂にも関わっています(48)。
細胞が分化、分裂する際には細胞を収縮させる必要があり、
その際に、樹状突起(がある場合にはそれ)を引き戻す(49)必要がおそらくあります。
アクチンは合成だけではなく、分解も速く、
神経系細胞の分化、分裂にはアクチンの速い分解による
細胞膜突起の解消が必要だと推測されます。
他方でシナプス形成においては神経連結の最終段階なので
成長円錐からフィロポディアが対となる神経細胞の
フィロポディア先端に十分にひきつけられた後、形成されますが、
神経節を形成するためにはフィロポディアの位置を安定化させる必要があります。
その安定化に関わっている受容体がエフリン(EphB2)です(53)。
エフリンはシナプス形成に関わる細胞接着分子です(52)。

神経突起は初めにランダムに形成され、
居所的なポテンシャル信号を検知して、
それを分岐点(Stable point)として枝形成するモデルが提唱されています(48:Fig.3)。
例えば、環境内のガイドポストニューロンに接触すると
接触したフィロポディアが拡張し、新しい成長円錐となり、
それにより主要に伸びる軸索、成長円錐、神経突起が決定される。
このような機序が提案されています。

フィロポディアは先端で接触、
あるいは分解合成、ミヨシンモーター(50)によって生じる牽引力で
成長円錐(growth cone)や細胞本体を動かす力を生みます。
先端に接触した物体との機械的ストレスを感知し、
それによって動きを決定する機序も存在します。

フィロポディアがどれくらい活発に形成されるか、
その長さ、数は、神経細胞においては
それよりも太い軸索や成長円錐の動き。
これによっても支配されるかもしれません(51)。


- 免疫系における樹状細胞による抗原提示(10)
- マクロファージによる力の生成(11)

- ウイルス伝播(12)

ウィルスではフィロポディアの突起が細胞内浸入の為の導線となる。
このような可能性が示唆されています(Viral surfing)(54:Figure 1)(55)。
この時、ウィルスをひきつける分子としては
ヘパラン硫酸などの結合性を持つ糖鎖などが想定されます(54:Figure 2)。

おそらくフィロポディアを形成する条件は
細胞質内のアクチン重合体化だけに依存しないと思われます。
そのフィロポディアの境界となる脂質膜の条件もあります。
アスペクト比の長い突起を形成するためには
特に先端部においては高い曲率が必要なため
脂質膜の弾性が高く、柔らかい必要があるため、
脂質膜の構成として分子飽和度の低い、隙間の多い、膜流動性が高い
不飽和脂肪酸が多くなると思います。
膜流動性が高いので、膜上のたんぱく質の移動度が上がり、
タンパク質は平衡状態では引き合う特性が一般にあるので
移動度が上がると膜貫通タンパク質は集まりやすくなります。
例えば、
膜たんぱく質と結合性を持つ物質が集まっているところに
脂質膜の流動性を持って誘導されるように膜たんぱく質が集まるとすると、
そうした脂質膜上の動きが細胞質内のアクチン合成の機序の
付加的な条件としてフィロポディア発生機序に関連するかもしれません。
他方で
PI3Kとフィロポディア形成の関連が指摘されています(61)。
これが生成するPIP分子やコレステロール濃度の局在化が、膜流動性を調整し、
フィロポディア形成を誘導する膜条件を誘導するかもしれません。
このことから、
フィロポディアの部分では
インテグリン、カドヘリンなどの細胞接着分子だけではなく
細胞膜上にある多様な膜貫通タンパク質が高密度で集まる。
このように想定されます。
そうすると、ウィルスに限らず、他の細胞や
炎症性サイトカインなども含めて
フィロポディア周辺では物質が集まりやすくなります。
このことから
ウィルスや免疫認識を高める働きがフィロポディアには
ある程度、共通的にあると推定されます。

膜変形が容易なことからフィロポディアは
突起部から細胞外小胞を放出することも知られています(56)。
逆に言うとフィロポディア由来の細胞外小胞があるということは
エクソソームなどの形成機序と同じように
ある程度、不飽和脂肪酸が構成として多くある必要性。
このことが示唆されます。

上述したアクチン重合体化を促すCDC42は
- Herpes simplex virus-1 (HSV-1) 
- Human immunodeficiency virus (HIV)
- African swine fever virus (ASFV)(57)
これらのウィルスによって活性化され、
フィロポディアの生成がウィルス依存で促されることがあります(54)。


また、フィロポディアは以下の現象とも関連しています
- 傷の修復(13)
- 胚の背側閉鎖(dorsal closure of Drosophila embryos)(14)
- 化学的走化性(chemotaxis)(15)
- Delta-Notchシグナル伝達(16)
- 血管新生(angiogenesis)(17)
- 細胞接着(cell adhesion)(18)
- 細胞移動(19)

- がんの転移(20)

癌で度々活性化がみられるWnt/β-catenin(59)は
フィロポディア内部のアクチンの束構造のリンカーである
Fascin mRNAを亢進する働きがあります(60)。

特定の種類のフィロポディアには、
以下のようにさまざまな名前が付けられています。

- マイクロスパイク(microspikes)(21)
- 仮足(pseudopods)(22)
- 細いフィロポディア(thin filopodia)(23)
- 太いフィロポディア(thick filopodia)(24)
- グリオポディア(gliopodia)(25)
- ミオポディア(myopodia)(26)
- インバドポディア(invadopodia)(27)
- ポドソーム(podosomes)(27)
- テロポード(telopodes)(28)
- トンネリングナノチューブ(tunneling nanotubes)(29)
- 樹状突起(dendrites)(30)


(参考文献)
(1)
Taru Muranen
The Neurofibromatosis 2 tumor suppressor merlin in cytoskeleton organization and cell cycle regulation
(2)
David Bentley & Alma Toroian-Raymond 
Disoriented pathfinding by pioneer neurone growth cones deprived of filopodia by cytochalasin treatment
Nature volume 323, pages712–715 (1986)
(3)
Holger Kress 1, Ernst H K Stelzer, Daniela Holzer, Folma Buss, Gareth Griffiths, Alexander Rohrbach
Filopodia act as phagocytic tentacles and pull with discrete steps and a load-dependent velocity
Proc Natl Acad Sci U S A. 2007 Jul 10;104(28):11633-8
(4)
Y Ohta 1, N Suzuki, S Nakamura, J H Hartwig, T P Stossel
The small GTPase RalA targets filamin to induce filopodia
Proc Natl Acad Sci U S A. 1999 Mar 2;96(5):2122-8. 
(5)
D Hanein 1, P Matsudaira, D J DeRosier
Evidence for a conformational change in actin induced by fimbrin (N375) binding
J Cell Biol. 1997 Oct 20;139(2):387-96
(6)
J Victor Small 1, Theresia Stradal, Emmanuel Vignal, Klemens Rottner
The lamellipodium: where motility begins
Trends Cell Biol. 2002 Mar;12(3):112-20.
(7)
Pieta K. Mattila & Pekka Lappalainen
Filopodia: molecular architecture and cellular functions
Nature Reviews Molecular Cell Biology volume 9, pages446–454 (2008)
(8)
David Bentley & Alma Toroian-Raymond
Disoriented pathfinding by pioneer neurone growth cones deprived of filopodia by cytochalasin treatment
Nature volume 323, pages712–715 (1986)
(9)
Rafael Yuste & Tobias Bonhoeffer 
Genesis of dendritic spines: insights from ultrastructural and imaging studies
Nature Reviews Neuroscience volume 5, pages24–34 (2004)
(10)
Haoran Jing
Nanoscale topological mapping of filopodia in live dendritic cells
Biophysical Journal  Volume 121, Issue 3, Supplement 1496aFebruary 11, 2022
(11)
Holger Kress 1, Ernst H K Stelzer, Daniela Holzer, Folma Buss, Gareth Griffiths, Alexander Rohrbach
Filopodia act as phagocytic tentacles and pull with discrete steps and a load-dependent velocity
Proc Natl Acad Sci U S A. 2007 Jul 10;104(28):11633-8. 
(12)
Kenneth Chang 1, John Baginski 1, Samer F Hassan 2, Michael Volin 1, Deepak Shukla 2, Vaibhav Tiwari 
Filopodia and Viruses: An Analysis of Membrane Processes in Entry Mechanisms
Front Microbiol. 2016 Mar 10;7:300
(13)
Maria Teresa Abreu-Blanco 1, James J Watts 1, Jeffrey M Verboon 1, Susan M Parkhurst 1,✉
Cytoskeleton responses in wound repair
Cell Mol Life Sci. 2012 Feb 15;69(15):2469–2483
(14)
A Jacinto 1, W Wood, T Balayo, M Turmaine, A Martinez-Arias, P Martin
Dynamic actin-based epithelial adhesion and cell matching during Drosophila dorsal closure
Curr Biol. 2000 Nov 16;10(22):1420-6
(15)
Dana Meyen 1, Katsiaryna Tarbashevich 1,†, Torsten U Banisch 1,2,†, Carolina Wittwer 1, Michal Reichman-Fried 1, Benoît Maugis 1, Cecilia Grimaldi 1, Esther-Maria Messerschmidt 1, Erez Raz 1,
Dynamic filopodia are required for chemokine-dependent intracellular polarization during guided cell migration in vivo
eLife. 2015 Apr 15;4:e05279. 
(16)
Michael Cohen 1, Marios Georgiou, Nicola L Stevenson, Mark Miodownik, Buzz Baum
Dynamic filopodia transmit intermittent Delta-Notch signaling to drive pattern refinement during lateral inhibition
Dev Cell. 2010 Jul 20;19(1):78-89
(17)
Li-Kun Phng 1, Fabio Stanchi, Holger Gerhardt
Filopodia are dispensable for endothelial tip cell guidance
Development. 2013 Oct;140(19):4031-40. 
(18)
J L Gallop
Filopodia and their links with membrane traffic and cell adhesion
Semin Cell Dev Biol. 2020 Jun:102:81-89
(19)
Maik C. Bischoff, Sebastian Lieb, Renate Renkawitz-Pohl & Sven Bogdan
Filopodia-based contact stimulation of cell migration drives tissue morphogenesis
Nature Communications volume 12, Article number: 791 (2021) 
(20)
Laura M Machesky
Lamellipodia and filopodia in metastasis and invasion
FEBS Lett. 2008 Jun 18;582(14):2102-11.
(21)
Tatyana M Svitkina 1, Elena A Bulanova, Oleg Y Chaga, Danijela M Vignjevic, Shin-ichiro Kojima, Jury M Vasiliev, Gary G Borisy
Mechanism of filopodia initiation by reorganization of a dendritic network
J Cell Biol. 2003 Feb 3;160(3):409-21.
(22)
Kim Baumann 
Invasion of the pseudopods
Nature Reviews Molecular Cell Biology volume 8, page943 (2007)
(23)
J Miller 1, S E Fraser, D McClay
Dynamics of thin filopodia during sea urchin gastrulation
Development. 1995 Aug;121(8):2501-11
(24)
Kyung-Jin Jang 1, Min Sung Kim 2, Daniel Feltrin 3, Noo Li Jeon 2, Kahp-Yang Suh 1,2,*, Olivier Pertz ]]
Two Distinct Filopodia Populations at the Growth Cone Allow to Sense Nanotopographical Extracellular Matrix Cues to Guide Neurite Outgrowth
PLoS One. 2010 Dec 30;5(12):e15966
(25)
Irina Vasenkova 1, David Luginbuhl, Akira Chiba
Gliopodia extend the range of direct glia-neuron communication during the CNS development in Drosophila
Mol Cell Neurosci. 2006 Jan;31(1):123-30.
(26)
Sarah Ritzenthaler 1, Akira Chiba
Myopodia (postsynaptic filopodia) participate in synaptic target recognition
J Neurobiol. 2003 Apr;55(1):31-40. 
(27)
Stefan Linder, Pasquale Cervero, Robert Eddy & John Condeelis
Mechanisms and roles of podosomes and invadopodia
Nature Reviews Molecular Cell Biology volume 24, pages86–106 (2023)
(28)
Cristina Mariana Niculite 1, T M Regalia, Mihaela Gherghiceanu, R Huica, Mihaela Surcel, C Ursaciuc, M Leabu, L M Popescu
Dynamics of telopodes (telocyte prolongations) in cell culture depends on extracellular matrix protein
Mol Cell Biochem. 2015 Jan;398(1-2):157-64.
(29)
Ranabir Chakraborty, Takashi Nonaka, Masato Hasegawa & Chiara Zurzolo
Tunnelling nanotubes between neuronal and microglial cells allow bi-directional transfer of α-Synuclein and mitochondria
Cell Death & Disease volume 14, Article number: 329 (2023) 
(30)
Chengyu Sheng, Uzma Javed, Mary Gibbs, Caixia Long, Jun Yin, Bo Qin & Quan Yuan
Experience-dependent structural plasticity targets dynamic filopodia in regulating dendrite maturation and synaptogenesis
Nature Communications volume 9, Article number: 3362 (2018)
(31)
Tatyana M Svitkina 1, Elena A Bulanova, Oleg Y Chaga, Danijela M Vignjevic, Shin-ichiro Kojima, Jury M Vasiliev, Gary G Borisy
Mechanism of filopodia initiation by reorganization of a dendritic network
J Cell Biol. 2003 Feb 3;160(3):409-21.
(32)
Sawako Yamashiro, David M. Rutkowski, Kelli Ann Lynch, Ying Liu, Dimitrios Vavylonis & Naoki Watanabe 
Force transmission by retrograde actin flow-induced dynamic molecular stretching of Talin
Nature Communications volume 14, Article number: 8468 (2023) 
(33)
Catherine G Galbraith 1, Kenneth M Yamada, James A Galbraith
Polymerizing actin fibers position integrins primed to probe for adhesion sites
Science. 2007 Feb 16;315(5814):992-5
(34)
V Vasioukhin 1, C Bauer, M Yin, E Fuchs
Directed actin polymerization is the driving force for epithelial cell-cell adhesion
Cell. 2000 Jan 21;100(2):209-19
(35)
Agnieszka Kobielak & Elaine Fuchs
α-catenin: at the junction of intercellular adhesion and actin dynamics
Nature Reviews Molecular Cell Biology volume 5, pages614–625 (2004)
(36)
Gianluca Gallo 1, Paul C Letourneau
Regulation of growth cone actin filaments by guidance cues
J Neurobiol. 2004 Jan;58(1):92-102
(37)
Erik W. Dent, Adam V. Kwiatkowski, Leslie M. Mebane, Ulrike Philippar, Melanie Barzik, Douglas A. Rubinson, Stephanie Gupton, J. Edward Van Veen, Craig Furman, Jiangyang Zhang, Arthur S. Alberts, Susumu Mori & Frank B. Gertler
Filopodia are required for cortical neurite initiation
Nature Cell Biology volume 9, pages1347–1359 (2007)
(38)
C D Nobes 1, A Hall
Rho, rac, and cdc42 GTPases regulate the assembly of multimolecular focal complexes associated with actin stress fibers, lamellipodia, and filopodia
Cell. 1995 Apr 7;81(1):53-62. 
(39)
Stéphanie Pellegrin 1, Harry Mellor
The Rho family GTPase Rif induces filopodia through mDia2
Curr Biol. 2005 Jan 26;15(2):129-33
(40)
Nina Kureishy 1, Vasileia Sapountzi, Soren Prag, N Anilkumar, Josephine Clare Adams
Fascins, and their roles in cell structure and function
Bioessays. 2002 Apr;24(4):350-61
(41)
Matthias Krause 1, Erik W Dent, James E Bear, Joseph J Loureiro, Frank B Gertler
Ena/VASP proteins: regulators of the actin cytoskeleton and cell migration
Annu Rev Cell Dev Biol. 2003:19:541-64.
(42)
M Reinhard 1, M Halbrügge, U Scheer, C Wiegand, B M Jockusch, U Walter
The 46/50 kDa phosphoprotein VASP purified from human platelets is a novel protein associated with actin filaments and focal contacts
EMBO J. 1992 Jun;11(6):2063-70. 
(43)
James E Bear 1, Tatyana M Svitkina, Matthias Krause, Dorothy A Schafer, Joseph J Loureiro, Geraldine A Strasser, Ivan V Maly, Oleg Y Chaga, John A Cooper, Gary G Borisy, Frank B Gertler
Antagonism between Ena/VASP proteins and actin filament capping regulates fibroblast motility
Cell. 2002 May 17;109(4):509-21.
(44)
François Ferron 1, Grzegorz Rebowski, Sung Haeng Lee, Roberto Dominguez
Structural basis for the recruitment of profilin-actin complexes during filament elongation by Ena/VASP
EMBO J. 2007 Oct 31;26(21):4597-606
(45)
Bruce L Goode 1, Michael J Eck
Mechanism and function of formins in the control of actin assembly
Annu Rev Biochem. 2007:76:593-627. 
(46)
Hiroshi Tokuo 1, Mitsuo Ikebe
Myosin X transports Mena/VASP to the tip of filopodia
Biochem Biophys Res Commun. 2004 Jun 18;319(1):214-20
(47)
Yvonne S. Aratyn,* Thomas E. Schaus,* Edwin W. Taylor,* and Gary G. Borisy
Intrinsic Dynamic Behavior of Fascin in Filopodia
Molecular Biology of the Cell Vol. 18, 3928–3940, October 2007
(48)
Charlotte B. Wit, P. Robin Hiesinger 
Neuronal filopodia: From stochastic dynamics to robustness of brain morphogenesis 
Seminars in Cell & Developmental Biology Volume 133, 15 January 2023, Pages 10-19
(49)
Thomas Bornschlögl 1, Stéphane Romero, Christian L Vestergaard, Jean-François Joanny, Guy Tran Van Nhieu, Patricia Bassereau
Filopodial retraction force is generated by cortical actin dynamics and controlled by reversible tethering at the tip
Proc Natl Acad Sci U S A. 2013 Nov 19;110(47):18928-33
(50)
N. O. Alieva, A. K. Efremov, S. Hu, D. Oh, Z. Chen, M. Natarajan, H. T. Ong, A. Jégou, G. Romet-Lemonne, J. T. Groves, M. P. Sheetz, J. Yan & A. D. Bershadsky
Myosin IIA and formin dependent mechanosensitivity of filopodia adhesion
Nature Communications volume 10, Article number: 3593 (2019)
(51)
Maria M Bagonis 1 2, Ludovico Fusco 3, Olivier Pertz 3 4, Gaudenz Danuser 
Automated profiling of growth cone heterogeneity defines relations between morphology and motility
J Cell Biol. 2019 Jan 7;218(1):350-379.
(52)
Klas Kullander & Rüdiger Klein 
Mechanisms and functions of eph and ephrin signalling
Nature Reviews Molecular Cell Biology volume 3, pages475–486 (2002)
(53)
Matthew S Kayser 1, Mark J Nolt, Matthew B Dalva
EphB receptors couple dendritic filopodia motility to synapse formation
Neuron. 2008 Jul 10;59(1):56-69.
(54)
Kenneth Chang 1, John Baginski 1, Samer F Hassan 2, Michael Volin 1, Deepak Shukla 2, Vaibhav Tiwari 
Filopodia and Viruses: An Analysis of Membrane Processes in Entry Mechanisms
Front Microbiol. 2016 Mar 10;7:300
(55)
Maik J Lehmann 1, Nathan M Sherer 1, Carolyn B Marks 2, Marc Pypaert 2, Walther Mothes 1
Actin- and myosin-driven movement of viruses along filopodia precedes their entry into cells
J Cell Biol. 2005 Jul 18;170(2):317–325.
(56)
Tamako Nishimura 1, Takuya Oyama 1, Hooi Ting Hu 1, Toshifumi Fujioka 1, Kyoko Hanawa-Suetsugu 1, Kazutaka Ikeda 2, Sohei Yamada 3, Hiroki Kawana 4, Daisuke Saigusa 5, Hiroki Ikeda 6, Rie Kurata 1, Kayoko Oono-Yakura 1, Manabu Kitamata 1, Kazuki Kida 1, Tomoya Hikita 7, Kiyohito Mizutani 8, Kazuma Yasuhara 3, Yuko Mimori-Kiyosue 9, Chitose Oneyama 7, Kazuki Kurimoto 6, Yoichiroh Hosokawa 3, Junken Aoki 4, Yoshimi Takai 8, Makoto Arita 10, Shiro Suetsugu 
Filopodium-derived vesicles produced by MIM enhance the migration of recipient cells
Dev Cell. 2021 Mar 22;56(6):842-859.e8. 
(57)
Jose I Quetglas 1, Bruno Hernáez, Inmaculada Galindo, Raquel Muñoz-Moreno, Miguel A Cuesta-Geijo, Covadonga Alonso
Small rho GTPases and cholesterol biosynthetic pathway intermediates in African swine fever virus infection
J Virol. 2012 Feb;86(3):1758-67.
(58)
Danijela Vignjevic 1, Shin-ichiro Kojima, Yvonne Aratyn, Oana Danciu, Tatyana Svitkina, Gary G Borisy
Role of fascin in filopodial protrusion
J Cell Biol. 2006 Sep 11;174(6):863-75. 
(59)
Fanyuan Yu, Changhao Yu, Feifei Li, Yanqin Zuo, Yitian Wang, Lin Yao, Chenzhou Wu, Chenglin Wang & Ling Ye
Wnt/β-catenin signaling in cancers and targeted therapies
Signal Transduction and Targeted Therapy volume 6, Article number: 307 (2021) 
(60)
Antti Arjonen 1, Riina Kaukonen 1, Johanna Ivaska 1,
Filopodia and adhesion in cancer cell motility
Cell Adh Migr. 2011 Sep 1;5(5):421–430
(61)
Guillaume Jacquemet, Habib Baghirov, Maria Georgiadou, Harri Sihto, Emilia Peuhu, Pierre Cettour-Janet, Tao He, Merja Perälä, Pauliina Kronqvist, Heikki Joensuu & Johanna Ivaska
L-type calcium channels regulate filopodia stability and cancer cell invasion downstream of integrin signalling
Nature Communications volume 7, Article number: 13297 (2016) 
 

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